ALBERT

Notes: SUMMARY. According to Kahl the trichostome genus Trichopelma may be considered to include five species: T. sphagnetanim, T. eurystoma, T. euglenivora, T. opaca, and T. torpens. A sixth species is added in the present account. The following constant characteristics distinguish it from the five earlier described ones: total lack of trichocysts; differences in the morphology of the body surfaces; dissimilarity of the upper and lower surfaces in shape (one plane, the other convex), in ciliation, and in number of cuticular furrows; unique location of the contractile vacuole.

Notes: RESUME. Chacun des 45–80 organelles adoraux de Bursaria truncatella O. F. Müller est constitué de 3 rangées de cinétosomes et l'aire buccale droite est couverte de nombreuses doubles rangées de cinétosomes. La stomatogenèse débute par la désorganisation et la résorption des organelles buccaux postérieurs. Puis, il y a désorganisation des rangées parorales de cinétosomes et multiplication des cinétosomes sur l'aire orale droite, en měme temps que sont rompues, selon une ligne oblique, un certain nombre de cinéties somatiques. La prolifération des cinétosomes aux extrémités des cinéties. de part et d'autre de la ligne de rupture, aboutit, d'une part, à la formation d'un champ anarchique qui est le primordium oral droit de l'opisthe, d'autre part, à la formation de nombreux doublets qui constituent chacun le primordium de chaque organelle adoral. Après la séparation des tomites, les cinétosomes de l'aire droite s'ordonnent en doubles rangées et les organelles adoraux se complètent par addition d'une 3ème rangée de cinétosomes. Les cinétosomes somatiques sont jumelés, reliés par 2 desmoses. Les fibres transverses postérieures et les fibres postciliaires forment de longs rubans de microtubules dirigés vers l'arrière et juxtaposés dans les crětes intercinétiennes. Les doubles rangées droites de cinétosomes buccaux sont assimilables à des stichodyades. Les organelles des cinétosomes adoraux portent des rideaux de fibres postciliaires convergents ou divergents. La rangée postérieure de chaque organelle est non ciliée. Par son type de stomatogenèse, par sa structure corticale, par l'ultrastructure des organelles adoraux, Bursaria appartient aux Colpodidea, ce qui suggère des remarques de plusieurs types.SYNOPSIS. In Bursaria truncatella O. F. Müller, each of the 45–80 adoral organelles is composed of 3 rows of kinetosomes, and the right buccal area is covered by many double rows of kinetosomes. Stomatogenesis begins by disorganization and disappearance of the posterior buccal organelles. Next, there is disorganization of the paroral rows of kinetosomes and multiplication of kinetosomes in the right oral area; at the same time, some somatic kineties are disrupted along an oblique line. Multiplication of kinetosomes at the extremities of the kineties, on both sides of the disruption, leads to the formation of an anarchic field which is the right oral primordium of the opisthe and the formation of doublets each of which constitutes an adoral organelle. After the separation of the tomites. the kinetosomes in the right buccal area position themselves, and the adoral organelles are completed by the addition of a 3rd row of kinetosomes. Somatic kineties are formed by successive pairs of ciliated kinetosomes united by 2 desmoses. the long posterior transverse ribbons and the postciliary ribbons extend posteriad, overlapping in the pellicular ridges. Oral rows of kinetosomes on the right can be compared with stichodyads. the adoral kinetosomes have convergent or divergent postciliary ribbons. the posterior row of kinetosomes in each organelle is not ciliated. By the type of stomatogenesis, the cortical ultrastructure, the ultrastructure adoral of its organelles, Bursaria belongs to the Colpodidea.

Notes: RESUME.Après résorption des structures buccales du protomonte, la stomatogenèse ne commence que sur les produits de l'avant-dernière division du tomonte. Elle se poursuit et se complète sur les tomites individualisés de la dernière division. Au niveau des extrémités antérieures des cinéties somatiques intercalaires et des extrémités rompues de cinéties bipolaires, une lère vague de proliferation des cinétosomes produit de courtes lignes, obliques, de cinétosomes isolés. Elles se transforment en lignes d'une double rangèe de cinétosomes, à la suite d'une 2ème vague de multiplication de cinétosomes. Un alignement de ces segments, procédant de gauche à droite et d'avant en arrière, constitue successivement les 3 membranelles longitudinales en doublets (M1 puis M2 et M3) ainsi que la membrane parorale, également en doublet. Une 3ème vague de proliferation cinétosomienne juxtapose une rangée de cinétosomes à droite des doublets (sauf à l'extrémité postérieure de M1 et au niveau de la parorale) transformant les promembranelles en triplets. Cette proliferation cinétosomienne se prolonge par addition d'une 4ème rangée de cinétosomes au trajet médian et postérieur de M2 et peut-ětre à M3 et par juxtapositions successives de nouvelles rangées supplémentaires à l'extrémité postérieure de M2 (flamme). Les cinétosomes des rangées droites de promembranelles portent de larges rideaux de nombreuses fibres postciliaires. Les cinétosomes des autres rangées de M2, au moins, ont également des fibres postciliaires. Entre les cils de promembranelles il n'y a pas de couche alvéolaire, ni d'épiplasme. Une résorption des cinétosomes commence à se manifester par disparition des cinétosomes de la rangée gauche de la parorale dont subsistent les cinétosomes droits porteurs de fibres postciliaires. A vec le raccourcissement de l'aire buccale la résorption s'étend aux cinétosomes postérieurs des 2 rangées droites de M1, et des extrémités antérieures des 2 (ou 3?) rangées droites dc M3. Une invagination de la dépression buccale entraǐne vers la gauche les organelles buccaux et enfonce les cinéties vestibulaires en remontant en avant et à gauche leurs extrémités postérieures tronquées. Il y a régression postéro-antérieure totale des cinétosomes de la parorale. M1 reste constituée au départ de 3 rangées ciliaires; M2 est également formée de 3 rangées ciliaires doublées postérieurement de nombreuses rangées constituant la flamme; M3 n'est finalement constituée que d'une seule rangée ciliaire. Une ultime proliferation cinétosomienne aux extrémités antérieures de cinéties vestibulaires serait peut-ětre à l'origine d'un champ allongé de nouveaux cinétosomes vestibulaires.〈section xml:id="abs1-1"〉〈title type="main"〉ABSTRACTAfter resorption of the buccal structures of the protomont, stomatogenesis begins only in the products of the penultimate division of the tomont. It continues to completion in the individualized tomites of the last division. At the anterior ends of the intercalary somatic kineties and the broken ends of bipolar kineties, a first wave of kinetosome proliferation produces short streak lines of isolated kinetosomes. These develop into lines formed of double rows of kinetosomes following a second wave of kinetosome multiplication. An alignment of these segments, proceeding from left to right and from front to rear, constitutes successively the three longitudinal membranelles in doublets (M1 then M2 and M3), and the paroral membrane, also a doublet. A third wave of kinetosome proliferation juxtaposes a row of kinetosomes to the right of the doublets (except at the posterior end of M1 and at the level of the paroral membrane) to give triplets. This proliferation is extended by addition of a fourth row of kinetosomes on the median and posterior path of M2 and perhaps M3, and by successive juxtaposition of further rows at the posterior end of M2 (flare). The kinetosomes of the right hand rows of promembranelles bear wide ribbons of numerous postciliary fibers. There is no alveolar layer nor epiplasm between the cilia of the promembranelles. Resorption of kinetosomes begins by disappearance of the kinetosomes of the left hand row of the paroral membrane; the right hand kinetosomes carrying postciliary fibers remain. With shortening of the buccal zone, resorption extends to the kinetosomes of the two posterior rows of M1 and the anterior ends of the two (or three?) left hand rows of M3. An invagination of the buccal cavity draws the buccal organelles to the left and pushes in the vestibular kineties while raising forward and to the left their truncated posterior ends. Total postero-anterior regression of the kinetosomes of the paroral membrane occurs. Membranelle 1 remains composed of three rows of cilia; M2 is also composed of three rows of cilia edged posteriorly by numerous rows constituting the flare; M3 is composed of a single row of cilia. A final kinetosome proliferation at the anterior ends of the vestibular kineties might be responsible for the extended field of new vestibular kinetosomes.

Notes: Disematostoma colpidioides von Gelei, 1954, is a Peniculina which stands out principally by a very markedly-twisted shape, resulting from the allometric growth of some of the right somatic kineties, and by the sigmoid curvature of the postoral suture. During the fission of the macronucleus, it is possible to observe the expulsion of a small chromatic mass which degenerates quickly. A part of the buccal apparatus undergoes a dedifferentiation during the encystment, so that the three “peniculi” disappear while the vestibulary kineties persist.

Notes: Abstract Experiments in the Coastal Western Hemlock (CWH) biogeoclimatic zone on the British Columbia (BC) coast and the Interior Douglas-fir (IDF) biogeoclimatic zone in the BC interior revealed pronounced differences in the effect of six-carbon green leaf volatiles on the response by striped ambrosia beetles, Trypodendron lineutum to multiple funnel traps baited with the aggregation pheromone lineatin. In the IDF zone, four green leaf alcohols [1-hexanol, (E)-2-hexen-1-ol, (Z)-2-hexen-1-ol, and (Z)-3-hexen-1-ol], released alone or in a quaternary blend at ca. 4 mg/24 hr/compound, caused a 63–78% reduction in trap catches. Two aldehydes, hexanal and (E)-2-hexenal, released together at ca. 13.0 mg/24 hr/compound were weakly disruptive in one of two experiments. Conversely, in the CWH zone, the two aldehydes together caused a slight, but significant, increase in the response over that to lineatin in one of two experiments, and the blend of all four alcohols caused only weak disruption of response in one of two experiments. None of the alcohols released alone was bioactive. These results may reflect adaptations that ensure accurate host location in the two ecological zones. In the CWH zone, T. lineatum attacks conifer logs almost exclusively, and surrenders the cut or broken stump habitat to Gnathotrichus spp. In the IDF zone, T. lineatum readily attacks the base of trees killed by bark beetles or fire and may utilize green leaf alcohols to detect and avoid the vertical silhouettes represented by nonhost angiosperms such as black cottonwood and trembling aspen.